专利名称：罂粟碱的酶联免疫定量检测方法及其试剂盒的制作方法
技术领域：
本发明涉及罂栗碱的检测方法，尤其是涉及一种针对罂粟碱的酶联免疫定量检测方法及其试剂盒，属于化合物分析检测领域。
背景技术：
罂粟碱(1-[(3，4-二甲氧基苯基)甲基]-6，7-二甲氧基异喹啉)是自然界中存在的一种重要的苄基异喹啉类生物碱，在阿片类植物中含量通常很低(低于1％)，目前多用化学合成方法获得。在临床上罂粟碱常用于治疗脑、心和外周血管痉挛引起的缺血以及肾、胆和胃肠道等内脏痉挛，但其无选择的肌肉松弛作用也常导致血压降低，心律失常，其对人的致死剂量为100-500mg/kg。中药罂粟壳是罂粟科植物Papaver somniferum L.的干燥成熟果壳，其主要生物活性成分包括吗啡、可待因、蒂巴因、罂粟碱和那可汀等。罂粟壳的主要功能为敛肺、涩肠和止痛，因此常被用于治疗久咳、久泻、脱肛和脘腹疼痛等，但久服易成瘾。
由于罂粟碱及罂粟壳中所含其它成分的毒副作用和久服成瘾的危害，国家卫生部于1996年将罂粟碱列入麻醉药品管制品种，并对罂粟壳的流通和管理作了相应的严格规定。然而近年来一些不法经营者为了招徕顾客，通过不正当途径获得罂粟壳，并添加在其销售的食品(如火锅、卤味调料等)中，因此有必要通过检测(尤其是现场检测)相关食品中吗啡、罂粟碱等成分以实现对罂粟壳使用情况的监督，同时为了控制产品质量和用药安全，在生产过程和药理研究中也需要对罂粟碱含量进行快速、准确的测定。
目前检测罂粟碱的常用方法有化学分析法、光谱法、色谱法、电泳法、电化学法和免疫分析方法等，但对于基体成分复杂的生物、食品类样品，前三种方法的样品预处理过程繁琐、仪器运行费用高、操作复杂。而免疫分析方法通常对样品处理要求低、设备和操作相对简单。但现有的免疫分析方法，基本都是采用Yeremenko等(Yeremenko S.N.，SukhovI.Y，Ye I.，et al.，Khim.-Farm.Zh.，1992，26100-101)创立的方法合成全抗原，制备抗体，最终所建立的酶联免疫分析方法的灵敏度都不是十分理想。

发明内容
本发明的目的在于提供一种简单快速、操作方便、灵敏度高，适于水溶液中及植物成分(如果实、壳等)、食品中罂粟碱含量测定的酶联免疫分析方法。它包括如下步骤
(1)活化罂粟碱(PAP)的苄基甲氧基，分别与不同的载体蛋白偶联制成免疫全抗原和包被全抗原；(2)用免疫全抗原免疫动物，获得多克隆抗体；(3)用包被全抗原包被酶标板；(4)封闭后，加入上述多克隆抗体与待测样品的混合液进行竞争性结合反应，同时以多克隆抗体与标准罂粟碱溶液的混合液作为参比；(5)加入酶标二抗；(6)加底物显色，终止反应后目测即可得到罂粟碱的大致含量。
此外，根据需要还可以包括步骤(7)定量检测吸光度值，确定罂粟碱的含量。待测样品中罂粟碱的浓度与吸光度值成反比。
该方法基于竞争酶联免疫分析的原理，以固定于固相载体上的载体蛋白偶联的罂栗碱与溶液中游离的罂粟碱分子竞争性地结合反应体系中少量的罂粟碱抗体，通过测量最终与固相罂粟碱结合的抗体数目来指示溶液中参与竞争的游离罂粟碱的含量。这是一种竞争抑制的过程，最终的测量信号(吸光度值)与罂粟碱的含量成反比。
对于免疫分析方法而言，抗体是决定整个方法性能的重要基础，而抗体的效果在很大程度上取决于能引起相应动物发生免疫反应的抗原的结构。罂粟碱作为一类小分子化合物，虽然能与抗体发生免疫反应，即具有抗原性，但却不能直接引起动物机体的免疫应答反应，即不具有免疫原性。它只相当于抗原分子上的一个抗原决定簇，被称为半抗原。为此，必须将其与其它载体蛋白偶联，如牛血清白蛋白(BSA)、鸡卵清白蛋白(OVA)和钥孔嘁血蓝蛋白(KLH)等，获得全抗原后，才能用于动物免疫。但是为了使最终获得的抗体与全抗原上的半抗原结构具有良好的结合性质，在罂粟碱全抗原合成的过程中，分子活化和偶联位置的选择是至关重要的。本发明发现与Yeremenko等用罂粟碱分子中异喹啉环的3位连接蛋白制备全抗原相比，尽量保持罂粟碱分子在合成全抗原过程中基本特征骨架(6，7-二甲氧基异喹啉环)的完整性，可以使获得的针对罂粟碱小分子的多克隆抗体的免疫反应性更好，而且以该抗体与经相应基团连接牛血清白蛋白或鸡卵清白蛋白的罂粟碱包被抗原组合构成的免疫分析方法的灵敏度更高。本发明选择在罂粟碱的苄基甲氧基上进行活化，与载体蛋白偶联形成全抗原，既保持6，7-二甲氧基异喹啉环的完整性，又保证偶联位置与特征环距离最远，使罂粟碱分子的特征结构得到充分暴露。
上述测定罂粟碱含量的酶联免疫分析方法中，步骤(1)的载体蛋白选自牛血清白蛋白(BSA)、鸡卵清白蛋白(OVA)和钥孔嘁血蓝蛋白(KLH)；罂粟碱(PAP)通过其甲氧基苯环连接载体蛋白，具体反应途径如下1.罂粟碱在HBr水溶液中加热回流生成苯环3位或4位的单脱甲基罂粟碱(MDMPAP)； 2.苯环3位或4位的单脱甲基罂粟碱(3-MDMPAP或4-MDMPAP)在强碱条件下经卤代羧酸活化生成单脱甲基罂粟碱-O-羧烷基醚，如经α-溴乙酸活化生成单脱甲基罂粟碱-O-羧甲基醚(3-PAP-O-CME或4-PAP-O-CME)； 上述反应中的溴乙酸还可以用3-溴丙酸，3-氯丙酸代替。
3.单脱甲基罂粟碱-O-羧烷基醚经N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)和1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)-碳二亚胺(EDC)作用与载体蛋白偶联成全抗原，如PAP-O-CME与牛血清白蛋白(BSA)偶联成全抗原PAP-BSA。

本发明未采用在罂粟碱分子中异喹啉环的3位引入具有反应性的氨基进行活化的传统方法，而是选择在罂粟碱(PAP)的苄基甲氧基上进行活化，与牛血清白蛋白(BSA)、鸡卵清白蛋白(OVA)或钥孔嘁血蓝蛋白(KLH)偶联形成全抗原，既保持6，7-二甲氧基异喹啉环的完整性，又保证偶联位置与特征环距离最远，使罂粟碱分子的特征结构得到充分暴露。通过上述方法获得的牛血清白蛋白偶联的罂粟碱全抗原(PAP-BSA)、鸡卵清白蛋白偶联的罂粟碱全抗原(PAP-OVA)或钥孔嘁血蓝蛋白偶联的罂粟碱全抗原(PAP-KLH)，经免疫家兔，得到高亲和力的多克隆抗体，为整个检测方法的建立奠定了基础。
针对罂粟碱的抗体可以与包被全抗原上的罂粟碱决定簇发生特异性的结合，但任何一个物质过量都会造成竞争反应无效，本发明抗原包被液的浓度应在2-10μg/mL之间，5μg/mL时最佳；而多克隆抗体工作浓度在0.8-10μg/mL之间，4μg/mL时最佳。在上述条件下，包被全抗原与多克隆抗体的反应曲线符合免疫反应的特征，而且包被全抗原的结合位点略微过量，保证在抗体的有限结合位点可以发生竞争反应。
在优化的包被和抗体工作浓度下，若样品中含有罂粟碱，则会与包被全抗原竞争有限的抗体结合位点，造成最终结合到包被全抗原上的抗体量减少，引起吸光度值的变化。本发明方法中，最合适的罂粟碱浓度范围是0.1ng/mL-1000ng/mL。
上述步骤(5)通常使用辣根过氧化物酶标记的二抗；步骤(6)经酶底物四甲基联苯胺(TMB)作用显蓝色，加终止液硫酸，变成黄色；步骤(7)在450nm处测吸光度值A450nm。试样中罂粟碱的浓度与A450nm值成反比，通过绘制吸光度值-浓度对数的标准曲线求出样品中罂粟碱浓度。
本发明的方法适合于水溶液中罂粟碱的测定，该溶液可以是水、含有其他基质的血样、注射液或与水混溶的有机溶剂的水溶液。本发明的方法也适用于植物、食品类样品中罂粟碱的测定，在检测该类样品时，需要先将样品中的罂粟碱提取到一种合适的溶剂中，如水溶液，或甲醇、乙醇等有机溶剂中，一般要求过滤取清液。对于溶液的pH值，较佳的是7～8，保证抗原抗体之间的结合反应。
选用合适的溶剂和方法能够从植物及食品样中提取罂粟碱。用水或含水的甲醇、盐酸等溶液，采用超声、煮沸等方法均可从这些固体样品中提出罂粟碱。较佳的提取方法是选用80％甲醇，在室温下超声30分钟即可完成提取。
本发明的另一个目的在于提供一种结构简单、操作便利、灵敏度高的测定罂粟碱含量的试剂盒，包括包被有抗原的酶标板抗原为罂粟碱的甲氧基苯环与载体蛋白偶联的全抗原；第一抗体溶液含有针对罂粟碱的特异性抗体，为罂粟碱的甲氧基苯环与另一载体蛋白偶联的全抗原免疫动物得到的多克隆抗体，4℃存储；酶标二抗溶液含有酶标记的二抗，4℃存储，可选用的酶包括辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶(AP)和β-D-半乳糖苷酶；罂粟碱标准溶液作参比，用于绘制吸光度值-浓度对数的标准曲线；洗涤缓冲液含有吐温20的生理缓冲溶液，用于洗去酶标板上未结合的物质以及非特异性吸附的物质；样品稀释液生理缓冲溶液，用于稀释待测样品或罂粟碱标准溶液；底物溶液所含底物可被标记二抗的酶催化成有色产物；终止液用于终止酶催化反应。
上述载体蛋白选自牛血清白蛋白(BSA)、鸡卵清白蛋白(OVA)和钥孔嘁血蓝蛋白(KLH)，但用于包被的全抗原和免疫的全抗原所选的载体蛋白不同。
上述第一抗体溶液通常配制成1mg/mL，使用时稀释1000倍作为第一抗体工作液。
酶标二抗溶液使用时应稀释后作为酶标抗体工作液，使最终的吸光度值落入0.2～1.0，稀释倍数通常为500倍。
样品稀释液及洗涤缓冲液通常配制成10×溶液，使用时均作10倍稀释。
试剂盒(包括第一抗体工作液和酶标抗体工作液)在4℃存储，1×样品稀释液、1×洗涤缓冲液配制后可于常温保存。
应用试剂盒检测水溶液及植物成分(如果实，壳等)、食品中罂粟碱含量的方法，首先要求对样品进行适当的处理若样品为溶液，则可直接进行检测或简单过滤后进行检测；若样品为固体(果实、壳、食品等)，则以水或有机溶剂配合煮沸、超声等方法提取后，过滤取清液进行检测。
本发明的有益效果，一是用罂粟碱的甲氧基苯环连接牛血清白蛋白、鸡卵清白蛋白或钥孔嘁血蓝蛋白的全抗原免疫动物所获得的多克隆抗体效价较高，并且以该抗体为基础所建立的分析方法的重现性好，灵敏度高，罂粟碱的最低检出限可达0.06ng/mL(对火锅底料中添加罂粟壳的实际检出下限可达到0.025g罂粟壳/L汤)，比Yeremenko等创立的方法灵敏近10000倍，比目前最佳的色谱结果灵敏10倍。二是样品处理简单，生物体液样品、医用制剂可以直接测量或稍加稀释即可，而固体类样品则用甲醇或水经过超声提取，简单过滤就可用于检测。一般含有其它基质的样品，如血清，稀释40倍就可消除基体效应；而盐酸罂粟碱注射液等基体简单的溶液和罂粟壳、火锅底料等样品的提取液，只要浓度合适，直接检测即可。三是方法所涉及的仪器和试剂简单，通用性好，除全抗原和抗体之外，其它所有试剂、96孔酶标板、酶标仪及温箱等均极易获得，这使得本方法可以被许多检测机构及相应部门直接使用，作为检测罂粟碱的手段。
综上所述，由于本发明采用了全新的全抗原合成方法，获得高效价抗体，使检测的灵敏度达到了0.06ng/mL。本发明的方法和试剂盒特异性强，灵敏度高，能快速简单的检测生物体液样品(血液、尿样、分泌液)、药用制剂(注射液)和植物、食品中罂粟碱含量。而常见的色谱法，由于灵敏度所限，还需要进行浓缩等操作，所以本方法适于实现快速、灵敏的检测。这一方法不仅适于广大生产、医疗及检测部门对罂粟碱及罂粟壳的使用进行监测、控制，而且可以进一步制成试剂盒实现现场、及时的检测，这对于及时监控生产过程，观察个体给药以及现场食品监督都具有极其重要的意义。
具体实施方法实施例实施例1罂粟碱全抗原的制备及相应多克隆抗体的获取1)单脱甲基罂粟碱(MDMPAP)的合成取0.5g罂栗碱加入6mL 40％的HBr水溶液，搅拌加热回流反应15min；冷却后以10mL水稀释，并调pH为8.0；接着于室温避光放置1hr，过滤，以水洗涤沉淀3次，再向沉淀中加入4mL甲醇，加热回流1hr；随后旋蒸除去甲醇，加入0.5mL氯仿/甲醇(v/v＝95∶5)混合液溶解固体，并以该溶液作为洗脱液，用硅胶柱色谱分离反应物，最终获得单脱甲基罂粟碱固体约0.25g。
2)单脱甲基罂粟碱-O-羧甲基醚(PAP-O-CME)的合成取45mg步骤1产物溶于1.2mL干燥DMSO溶剂，加入0.088g KOH，搅拌反应5min；随后加入28.9mg溴乙酸，避光搅拌反应2hr，加入4mL冰水终止反应，并调pH为8.0；以氯仿萃取3次，回收未参加反应的单脱甲基罂粟碱；再以1mol/L的HCl调整水相pH至2.0，然后以氯仿萃取3次，萃取液经无水硫酸钠干燥，清液旋蒸至干，加入少量甲醇，析出黄白色沉淀，过滤并红外烤干，最终获得产品约20mg。
3)PAP-BSA全抗原的合成在1mL干燥的DMSO溶液中加入7mg步骤2产物，3.2mgNHS和5.5mg EDC，室温搅拌反应2hr；然后逐滴加入4mL 0.1mol/L pH7.0的NaHCO3水溶液(含45mg BSA)中，持续搅拌反应2hr；最后将所得溶液除盐冻干，得约40mg产物，-20℃保存。
4)免疫动物用步骤3所获得的全抗原按表1过程对家兔进行免疫；然后采血，4000rpm离心20min，取血清，-20℃冻存。
5)多克隆抗体的纯化取1mL血清，用0.06mol/L，pH 4.8的HAc-NaAc缓冲液稀释4倍，逐滴加入120μL辛酸，搅拌30min；于室温12,000rpm离心20min，取上清；接着加入体积为上清1/10的0.1mol/L，pH 7.4的PBS溶液，并用1.0mol/L NaOH调pH为7.4；搅拌下，滴加等体积pH 7.4的饱和硫酸铵溶液，静置2hr；于4℃12,000rpm离心30min，弃上清，并将沉淀溶于1mL 0.01mol/L，pH 7.4的PBS中，透析除盐，最后测定该抗体溶液的浓度，置于-20℃冻存待用。
表1.罂粟碱全抗原免疫家兔的完整流程

实施例2本发明检测方法的最低检出限及线性范围在96孔酶标板中，每孔用100μL 5μg/mL的PAP-OVA包被，于4℃过夜或37℃温育2小时；以5％脱脂奶粉溶液在37℃封闭2小时后，每孔中加入50μL 8μg/mL的纯化抗体溶液和50μL梯度稀释罂粟碱标准品溶液(浓度分别为0，0.2，2，20，200，2000μg/mL)，37℃温育1小时，然后每孔加入100μL的合适浓度的酶标二抗，使最终的吸光度值在0.2～1.0(通常商购的酶标二抗需1∶500稀释)，经过同样的温育过程后加入底物显色，10-15分钟后以2mol/L硫酸终止。每个试样同时做5份平行。
采用logit-log法对测定结果进行线性回归。本发明方法的工作曲线的线性范围为0.1-1000ng/mL；回归方程为ln(A/(A0-A))＝1.489-1.340logcPAP(R＝0.991，n＝5)。以竞争罂栗碱含量为0的测定结果做为空白参比，计算其5份平行样品的吸光度值的标准偏差σ，得出该方法的最低检测限为0.06ng/mL(定义为三倍信噪比)。
实施例3本发明与标准的高效液相色谱(HPLC)方法的比较以市售盐酸罂粟碱注射液(标称参考值为30mg/mL)为测量物，用本发明的方法和HPLC分别测量该注射液的浓度。
1)HPLC测量用色谱进行测量的操作条件如下色谱柱C18反相柱(Dikma Techonologies Diamonsil，5μ，150×4.6mm)；流动相甲醇-乙腈-H2O-冰醋酸(34∶47∶19∶0.05v/v)，流速1.0mL/min；柱温25℃检测器紫外检测器(UVD)，检测波长为254nm；进样器20μL样品环。
以0.1、0.5、1.0、2.0、5.0、8.0、10、12、15、20、30μg/mLPAP标准溶液作为工作曲线，采用峰面积积分，线性回归，确定HPLC对于罂粟碱的工作曲线为A(mAu)＝23.35+162.5 cPAP(R＝0.9999，n＝3)，线性范围为0.1-30μg/mL，检测限为0.05μg/mL(定义为三倍信噪比)。
在测量盐酸罂粟碱注射液的过程中，分别测量了1.5×104，6.0×103，3.75×103，3.0×103，2.0×103倍稀释的注射液，最终测得盐酸罂粟碱注射液的浓度为28.7mg/mL。
2)本发明方法(ELISA法)的测量ELISA操作过程及试剂量同实施例2中工作曲线的测定部分，具体测量了3×105，1.5×106和1.5×107倍稀释的盐酸罂粟碱注射液的浓度，最终测得盐酸罂粟碱注射液的浓度为30.3mg/mL。
两种方法的测量结果显示，HPLC和本发明方法的测量结果基本一致，但本发明的方法具有更低检测限及检测范围。
实施例4本发明方法的回收率测定以20倍稀释的正常人血清样品为基体，加入标准罂粟碱，使样品中罂粟碱的最终浓度分别为100ng/mL，20ng/mL，2ng/mL，0.8ng/mL，然后按实施例2中的过程与抗体混合进行测定。每个点作6份平行，结果见表2。
表2.人血清模拟样品的回收率测定(n＝6)

相对标准偏差表示测量的精密度，用多次测量后的标准差与测量平均值的比值百分数表示。结果表明该方法的回收率很好，且样品溶液中基体的干扰对方法影响小。
实施例4火锅底料中添加罂粟壳的试剂盒检测一个检测实际样品的罂粟碱检测试剂盒，盒内包括一块96孔酶标板，第一抗体溶液(含1mg/mL抗体)，酶标二抗溶液(100μL，1∶500稀释为工作液)，罂粟碱标准溶液(1mL，2mg/mL)，10×洗涤缓冲液(20mL，0.1mol/L PBST)，10×样品稀释液(20mL，0.1mol/LPBS)，显色液A(15mL)，显色液B(1mL 30％H2O2)，终止液(15mL，2mol/LH2SO4)以及操作流程一份。其中酶标板包被有抗原，抗原为罂粟碱通过其甲氧基苯环与载体蛋白偶联的全抗原；第一抗体溶液含有针对罂粟碱的特异性抗体(1mg/mL)，为通过上述全抗原免疫动物得到的多克隆抗体，4℃存储；酶标二抗溶液辣根过氧化物酶标记的二抗，4℃存储；罂粟碱标准溶液作参比，用于绘制吸光度值-浓度对数的标准曲线；10×洗涤缓冲液0.1mol/L的含吐温20的磷酸缓冲液，具体每升含有2.89gNa2HPO4·12H2O，80g NaCl，2g KCl，2g KH2PO4和0.05％(v/v)吐温20(Tween 20)，用于洗去酶标板上未结合的物质以及非特异性吸附的物质；10×样品稀释液0.1mol/L的磷酸缓冲液，具体每升含有2.89g Na2HPO4·12H2O，80gNaCl，2g KCl，2g KH2PO4，用于稀释待测样品或罂栗碱标准溶液；显色液A含0.6mg 3，3’，5，5’-四甲基联苯胺(3，3’，5，5’-tetramethylbenzidine，TMB)，44mgNa2HPO4·12H2O，137mg NaH2PO4·2H2O，100μL二甲基亚砜(dimethylsulfoxide，DMSO)和10mL的去离子水，与显色液B配合使用，并由辣根过氧化物酶作为催化剂，加速反应显色；
显色液B30％的H2O2水溶液，与显色液A配合，并由辣根过氧化物酶作为催化剂，加速反应显色；终止液2mol/L的H2SO4溶液，用于终止酶催化反应。
试剂盒的检测过程通过以下步骤得以实现1.加样将标准溶液、空白及待测样50μl与50μl第一抗体工作液混合，加入酶标板的各孔内，置于37℃温育1小时。
2.洗板用1×洗涤液将酶标板洗涤3次，每次3分钟，在滤纸上拍干。
3.每孔加入酶标二抗工作液100μl，37℃温育1小时。
4.洗板，同前。
5.显色底物A与底物B按1000∶1.5比例混合，每孔加入上述底物混合液100μL，暗处反应10-15分钟。
6.终止每孔加入终止液60μl，在450nm处测吸光值。通过与标准工作曲线的比较，得出样品中罂粟碱的含量。
将市售的固体海鲜底料加水超声提取后的溶液上清作为空白火锅汤料，取0.5g罂粟壳粉碎样加入8mL该汤料中，超声处理30分钟后，离心过滤，并用空白汤料清液定容至10mL，再分别稀释20、200、2000倍。然后将上述汤料50μL与50μL 8μg/mL的第一抗体溶液混合，加入96孔酶标板内，置于37℃温育1小时；以1×洗涤缓冲液洗涤3次，再于每个孔内加入100μL酶标抗体溶液(1∶500稀释)，37℃温育1小时；接着以1×洗涤缓冲液洗涤3次，每孔加入100μL显色液A与显色液B按1000∶1.5比例混合的显色液，，置于暗处反应15分钟；最后于每孔内加入60μL终止液结束反应，测量450nm处的吸光值。其中每个试样同时做6份平行，并以0，0.1，1，10，100，1000μg/mL罂粟碱标准溶液为工作曲线，样品的测量结果见表3。
表3.添加罂粟壳的火锅汤料系列稀释测定结果

表3中不同稀释倍数的测定结果基本一致，表明本试剂盒适合于检测实际火锅汤料中源于罂粟壳的罂粟碱含量。另外，由于2000倍稀释后的测量值已经接近本方法工作曲线的下限，若以此计算该方法的实际灵敏度，即相当于每升火锅汤料中加入0.025克罂粟壳就可被本试剂盒检出，可见该试剂盒的灵敏度完全可以满足食品中非法添加罂粟壳的实际检测的需求。
权利要求
1.一种测定罂粟碱含量的酶联免疫分析方法，包括如下步骤(1)活化罂粟碱的苄基甲氧基，分别与不同的载体蛋白偶联制成免疫全抗原和包被全抗原；(2)用免疫全抗原免疫动物，获得多克隆抗体；(3)用包被全抗原包被酶标板；(4)封闭后，加入上述多克隆抗体与待测样品的混合液进行竞争性结合反应，同时以多克隆抗体与标准罂粟碱溶液的混合液作为参比；(5)加入酶标二抗；(6)加底物显色，终止反应后目测即可得到罂粟碱的大致含量。
2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述步骤(1)制备全抗原包括以下步骤1-1.罂粟碱在HBr水溶液中加热回流生成苯环3位或4位的单脱甲基罂粟碱；1-2.苯环3位或4位的单脱甲基罂粟碱在强碱条件下经卤代羧酸活化生成单脱甲基罂粟碱-O-羧烷基醚；1-3.单脱甲基罂粟碱-O-羧烷基醚经N-羟基琥珀酰亚胺和1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)-碳二亚胺作用与载体蛋白偶联成全抗原。
3.如权利要求2所述的方法，其特征在于，所述步骤1-2中的卤代羧酸为α-溴乙酸、3-溴丙酸或3-氯丙酸。
4.如权利要求1或2所述的方法，其特征在于，所述载体蛋白选自牛血清白蛋白、鸡卵清白蛋白和钥孔嘁血蓝蛋白。
5.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述方法还可以包括步骤(7)定量检测吸光度值，确定罂粟碱的含量。
6.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述步骤(5)使用的是辣根过氧化物酶标记的二抗；步骤(6)经酶底物四甲基联苯胺作用显蓝色，加终止液硫酸，变成黄色。
7.如权利要求6所述的方法，其特征在于，该方法还包括步骤(7)在450nm处测吸光度值A450nm以确定罂粟碱的含量。
8.一种测定罂粟碱含量的试剂盒，包括包被有抗原的酶标板抗原为罂粟碱的甲氧基苯环与载体蛋白偶联的全抗原；第一抗体溶液含有针对罂粟碱的特异性抗体，为罂粟碱的甲氧基苯环与另一载体蛋白偶联的全抗原免疫动物得到的多克隆抗体，4℃存储；酶标二抗溶液含有酶标记的二抗，4℃存储；罂粟碱标准溶液用作参比，用于绘制吸光度值-浓度对数的标准曲线；洗涤缓冲液含有吐温20的生理缓冲溶液，用于洗去酶标板上未结合的物质以及非特异性吸附的物质；样品稀释液生理缓冲溶液，用于稀释待测样品或罂粟碱标准溶液；底物溶液所含底物可被标记二抗的酶催化成有色产物；终止液用于终止酶催化反应。
9.如权利要求6所述的试剂盒，其特征在于，所述载体蛋白选自牛血清白蛋白、鸡卵清白蛋白和钥孔嘁血蓝蛋白。
10.如权利要求6所述的试剂盒，其特征在于，所述标记二抗的酶为辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶或β-D-半乳糖苷酶。
全文摘要
本发明提供了一种定量检测罂粟碱的酶联免疫分析方法，以罂粟碱的甲氧基苯环连接载体蛋白制成免疫全抗原并获得其高效价抗体为基础，用罂粟碱的甲氧基苯环连接另一载体蛋白制成的包被全抗原包被酶标板，封闭后，加入所述高效价抗体与试验样品液进行竞争性结合反应，然后加入酶标二抗，显色，检测罂粟碱的存在。通过定量检测吸光度值还可以进一步确定罂粟碱的含量。本发明还提供了一种依据该方法制备的简便易行的试剂盒。由于本发明采用了全新的全抗原合成方法，获得高效价抗体，使检测的灵敏度达到了0.06ng/mL。本发明的方法和试剂盒特异性强，灵敏度高，能快速简单的检测生物体液样品、药用制剂和植物、食品中罂粟碱含量。
文档编号G01N33/531GK1821782SQ200610011570
公开日2006年8月23日 申请日期2006年3月28日 优先权日2006年3月28日
发明者宓捷波, 闫瑾, 徐菁, 赵美萍 申请人:北京大学